0.
|
Titelblatt und Inhaltsverzeichnis
|
|
1.
|
Einleitung
|
1
|
1.1.
|
Die Familie der Picornaviren
|
1
|
1.1.1
|
Das Humane Rhinovirus Typ 14 (HRV-14)
|
6
|
1.1.2
|
Die Virusstruktur von HRV-14
|
6
|
1.2.
|
Virusrezeptoren
|
9
|
1.2.1.
|
ICAM 1 als Virusrezeptor für HRV-14
|
12
|
1.3.
|
Der Reproduktionsmechanismus von Picornaviren
|
16
|
1.4.
|
Zielsetzung
|
22
|
2.
|
Material und Methoden
|
23
|
2.1.
|
Abkürzungen
|
23
|
2.2.
|
Verwendete Medien
|
25
|
2.3.
|
Verwendete Lösungen, Puffer und Seren
|
27
|
2.1.
|
Eingesetzte Substanzen
|
14
|
2.4.
|
Zellen
|
31
|
2.4.1.
|
HeLa-Zellen
|
31
|
2.4.2.
|
BHK-Zellen
|
31
|
2.4.3.
|
BHK-ICAM-1-Zellen
|
31
|
2.4.3.1.
|
Transfektion von BHK-Zellen mit ICAM 1
|
32
|
2.5.
|
Propagierung von HRV-14 und Coxsackievirus A21
|
33
|
2.6.
|
Hochreinigung von HRV-14
|
34
|
2.7.
|
RNA-Synthese-Test
|
35
|
2.7.1.
|
RNA-Synthese-Inhibitions-Test
|
37
|
2.8.
|
Plaque-Test
|
38
|
2.8.1.
|
Plaque-Reduktions-Test
|
39
|
2.9.
|
Endpunktstitration
|
40
|
2.10.
|
Elektronenmikroskopie
|
41
|
2.11.
|
ELISA zum Nachweis von membranständigem ICAM 1 (ICAM 1-ELISA)
|
42
|
2.12.
|
ELISA zum Nachweis von zellgebundenem HRV-14 (HRV 14-ELISA)
|
43
|
2.13.
|
Gradientenzentrifugation
|
45
|
2.14.
|
Die Markierung viraler Proteine mit 35S-Methionin
|
46
|
2.15.
|
SDS-Polyacrylamidgelelektrophorese (SDS-PAGE)
|
47
|
3.
|
Ergebnisse
|
49
|
3.1.
|
Die Einschleusung von HRV-14 in HeLa-Zellen durch rezeptorvermittelte Endozytose
|
49
|
3.1.1.
|
Viruseinschleusung und morphologische Veränderungen in HeLa-Zellen im Elektronenmikroskop nach Infektion mit HRV-14
|
49
|
3.1.2.
|
Die Beteiligung von ICAM 1 an der Einschleusung in HeLa-Zellen
|
51
|
3.1.2.1.
|
Die Blockierung der Adsorption von HRV-14 mit Anti-ICAM 1
|
52
|
3.1.2.2.
|
Die Kompetition der Adsorption von HRV-14 mit löslichem ICAM 1:Ig
|
54
|
3.1.2.3.
|
Das pH-abhängige Uncoating von HRV-14
|
59
|
3.2.
|
Die Einschleusung von HRV-14 in BHK-ICAM 1-Zellen
|
61
|
3.2.1.
|
Der Nachweis von ICAM 1 auf BHK-ICAM 1-Zellen 1-Zellen
|
62
|
3.2.2.
|
Viruseinschleusung und morphologische Veränderungen in BHK-ICAM 1-Zellen im Elektronenmikroskop im Vergleich zu BHK-Zellen nach Infektion mit HRV-14
|
63
|
3.2.3.
|
Die Beteiligung von ICAM 1 an der Einschleusung von HRV-14 in BHK-ICAM 1-Zellen
|
66
|
3.2.3.1.
|
Der Nachweis der Bindung von HRV-14 an BHK-ICAM 1-Zellen
|
66
|
3.2.3.2.
|
Die Bestimmung der RNA-Synthese von HRV-14 in BHK-ICAM 1-Zellen
|
68
|
3.2.3.3.
|
Die Bestimmung von infektiöser Virusnachkommenschaft von HRV 14 in BHK-ICAM 1-Zellen
|
69
|
3.2.3.4.
|
Die Bestimmung von infektiöser Virusnachkommenschaft von HRV 14 im Vergleich zu Coxsackievirus A21 in BHK-ICAM 1-Zellen
|
71
|
3.2.3.5.
|
Die Bestimmung von HRV-14-Proteinen in BHK-ICAM 1-Zellen im Vergleich zu HeLa- und BHK-Zellen
|
74
|
4.
|
Diskussion
|
78
|
4.1.
|
Verlauf der frühen Reproduktionsschritte von HRV-14 in HeLa-Zellen
|
78
|
4.2.
|
Einfluss von ICAM 1 als Virusrezeptor von HRV-14 auf die Adsorption und Penetration von HRV-14 in transfizierte BHK-ICAM 1-Zellen
|
79
|
4.3.
|
Einfluss von virusbindenden Rezeptoren auf die Permissivität von transfizierten Zellen
|
81
|
4.4.
|
Ablauf der frühen Reproduktionsschritte am Beispiel von Picornaviren, Semliki Forest Virus und Influenzaviren
|
83
|
4.4.1.
|
Wechselwirkung des Virus mit dem Virusrezeptor und Aufnahme des Virus in die Zelle
|
83
|
4.4.2.
|
Uncoating und Freisetzung der viralen RNA
|
85
|
4.4.3.
|
Initiation der Translation zu Beginn des ersten Replikationszyklusses
|
88
|
4.5.
|
Mögliche Ursachen des Effekts von zellgebundenem ICAM 1 auf die Aufnahme von HRV-14 in BHK-ICAM 1-Zellen im Unterschied zu HeLa-Zellen
|
93
|
5.
|
Zusammenfassung
|
96
|
6.
|
Literatur
|
97
|