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FU Berlin | |
Gerit Planitzer :Untersuchungen zur Stickstoffmonoxid-Synthase-1 (NOS-1)im Skelettmuskel der Ratte unter besonderer Benutzung dercomputergestützten Bildanalyse |
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|Zusammenfassung| |Inhaltsverzeichnis| |Ergänzende Angaben| |
InhaltsverzeichnisDie gesamte Dissertation können Sie als gezippten tar-File oder als zip-File laden. Durch Anklicken der Kapitelüberschriften können Sie das Kapitel in PDF-Format laden: 0. 1. 1.1. Stickstoffmonoxid und
Stickstoffmonoxid-Synthasen 1 1.2. Stickstoffmonoxid-Synthasen im Skelettmuskel 2 1.3. Nachweisverfahren für die NOS-1 im
Skelettmuskel 1.3.1. Biochemische Nachweise 4 1.3.2. Immunhistochemische Nachweise 4 1.3.3. Enzymhistochemische Nachweise 5 1.4. Costameren 6 1.5. Bildanalyse enzymhistochemischer Reaktionen 8 1.6. Zielsetzung der Arbeit 9 2. 2.1. Gewinnung und Aufarbeitung der Gewebsproben 2.1.1. Gewebsproben für histochemische und biochemische
Untersuchungen 11 2.1.2. Kontrahierte und dilatierte Muskelproben 12 2.1.3. Gezupfte Skelettmuskelfasern 12 2.2. Katalytische Histochemie 2.2.1. Allgemeine Vorbehandlung der Kryostatschnitte 13 2.2.2. NADPH-Diaphorase / NOS-1-Diaphorase 2.2.2.1. Standardmedium für die NADPH-Diaphorase 13 2.2.2.2. Leerwertuntersuchungen 14 2.2.2.3. Modifikation des Standardmediums für die
NOS-1-Diaphorase 14 2.2.2.4. Formazanquantifizierung in Kryostatschnitten 14 2.2.3. NADH-Diaphorase 15 2.2.4. Succinat-Dehydrogenase 15 2.2.5. Cytochrom-Oxidasen 15 2.2.6. Glyceraldehyd-3-Phosphat-Dehydrogenase 16 2.2.7. Experimente mit NO-Donatoren 16 2.3. Immunhistochemie 2.3.1. Vorbehandlung der Kryostatschnitte 17 2.3.2. Primärantikörper 17 2.3.3. Sekundärantikörper, Visualisierung 18 2.4. Proteinbiochemische Methoden 2.4.1. Probenaufarbeitung 19 2.4.2. Proteinbestimmung 19 2.4.3. SDS-Polyacrylamid-Gelelektrophorese 19 2.4.4. Western-Blot 21 2.4.5. Färbeverfahren 21 2.4.6. Visualisierung gelelektrophoretisch aufgetrennter
Proteine 22 2.5. Bildanalyse 2.5.1. Geräte, Software 23 2.5.2. Messungen räumlicher Größen 2.5.2.1. Messung des Sarkolemmgehaltes 24 2.5.3. Extinktionsmessungen, Datenaufarbeitung 2.5.3.1. Statische Extinktionsmessungen (Endpunktmessungen) 25 2.5.3.2. Fortlaufende Extinktionsmessungen (Kinetische
Messungen) 25 2.5.3.3. Grundlagen der Messung von Grauwerten in
Kryostatschnitten 26 2.5.3.4. Datenaufarbeitung 30 2.6. Statistik 2.6.1. Allgemeine statistische Angaben 32 2.6.2. Mittelwertvergleiche 32 2.6.3. Tests auf Korrelation zweier Merkmale 33 2.6.4. Meßwiederholungsstudie 33 3. 3.1. Verteilungsmuster der NADPH-Diaphoraseaktivität
in Skelettmuskelfasern 3.1.1. Vergleich mit den Verteilungsmustern von NADH-Diaphorase,
SDH, MHC und SERCA-1 3.1.1.1. Längsschnitte von Skelettmuskelfasern 34 3.1.1.2. Querschnitte von Skelettmuskelfasern 37 3.1.2. Charakterisierung der NADPH-Diaphorasen mit
Inhibitoren 39 3.1.3. Vergleich mit dem Verteilungsmuster der
NOS-1-Immunfluoreszenz 41 3.2. NOS-1 als costamerisch organisiertes Enzym im
Sarkolemm von Skelettmuskelfasern 3.2.1. Reguläre und irreguläre Costameren in 60
µm dicken Kryostatschnitten 3.2.1.1. Charakterisierung durch NOS-1-Diaphorase 43 3.2.1.2. Charakterisierung durch NOS-1-Immunhistochemie 46 3.2.2. Reguläre und irreguläre Costameren in gezupften
Fasern 49 3.2.3. Funktionelle Analyse irregulärer Costameren 50 3.3. NOS-1 in verschiedenen Skelettmuskelfasertypen 3.3.1. Überprüfung des bildanalytischen Verfahrens zur
Messung von Enzymaktivitäten 3.3.1.1. Vergleich der Messungen mit und ohne Berechnung der
Fuzzy-Maske 52 3.3.1.2. Meßwiederholungsstudie 53 3.3.2. Expression der NOS-1 in verschiedenen Skelettmuskeln 3.3.2.1. Quantitative Analyse mittels Western-Blot 53 3.3.2.2. Qualitativ-histochemische NOS-1-Faserverteilung 55 3.3.2.3. Quantifizierung von NOS-1-Protein und
NOS-1-Diaphoraseaktivität 56 3.3.2.4. Enzymkinetische Parameter und NOS-1-Verteilung in
verschiedenen Fasertypen 58 3.3.3. Bildanalytische Aktivitätsmessung der NOS-1 in
verschiedenen Fasertypen 60 3.3.4. Wirkung von NO-Donatoren auf Cytochrom-Oxidasen und
GAPDH 61 4. 4.1. NADPH-Diaphoraseaktivität als spezifischer
Nachweis für NOS-1 im Skelettmuskel 64 4.2. NOS-1 als costamerisch organisiertes Enzym 69 4.3. Fasertypabhängige Expression der NOS-1 73 4.4. Biologische Wirkung des NOS-1/NO-Systems im
Skelettmuskel 75 4.5. Wert bildanalytischer Verfahren zur
Aktivitätsmessung von Enzymen 78 5. 81 6. 83 Verwendete Abkürzungen I Lebenslauf II Danksagung III | |||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Ergänzende Angaben: | ||
Online-Adresse: | http://www.diss.fu-berlin.de/2002/69/index.html | |
Sprache: | Deutsch | |
Keywords: | nitric oxide NOS-1 costameres diaphorase image analysis | |
DNB-Sachgruppe: | 33 Medizin | |
Datum der Disputation: | 16-Apr-2002 | |
Entstanden am: | Fachbereich Humanmedizin, Freie Universität Berlin | |
Erster Gutachter: | Prof. Dr. med. Reinhart Gossrau | |
Zweiter Gutachter: | Prof. Dr. M. Bräutigam | |
Kontakt (Verfasser): | planitz@zedat.fu-berlin.de | |
Kontakt (Betreuer): | gossrau@ukbf.fu-berlin.de | |
Abgabedatum: | 07-May-2002 | |
Freigabedatum: | 08-May-2002 |
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